Labordiagnostik: Rotlauf

Verfügbare Testverfahren:

Makroskopische Anzeichen

• Visuelle Inspektion von Läsionen
• Vorteile:
  • Meist pathognomonisch (=typische Anzeichen für Rotlauf): akute Hautläsionen (leicht erhaben), multifokal, rosa bis violett, rautenförmig

• Nachteile:
  • Neben den Hautläsionen sind alle weiteren Läsionen bei vielen anderen Erkrankungen bekannt
  • Erfordern meistens eine weitere diagnostische Bestätigung

Bakterielle Kultur

• Isolierung lebender Organismen, den Rotlaufbakterien, aus Läsionsgewebe
• Probenmaterial: Blut, Milz, Lunge, Leber, Niere, Lymphknoten, Gelenkflüssigkeit
• Vorteile:
  • Bakterien wachsen bei akuten Fällen leicht in 1–2 Tagen
  • Einfach in jedem Labor durchführbar (einschließlich Laboren in Tierarztpraxen)
  • Relativ kostengünstig
• Nachteile:
  • Selektive Anreicherung kann bei chronischen Fällen notwendig sein
  • Bakterienwachstum kann in Proben von zuvor mit Antibiotika behandelten Schweinen gehemmt sein

Antimikrobielle Empfindlichkeit

• Testet die Fähigkeit lebender Organismen, unter spezifischen Konzentrationen verschiedener Antimikrobiotika, zu wachsen
• Probenmaterial: Blut, Milz, Lunge, Leber, Niere, Lymphknoten, Gelenkflüssigkeit
• Vorteile:
  • Identifizierung der Anfälligkeit oder Resistenz eines spezifischen Isolats gegenüber gängigen Antimikrobiotika
  • Ermittttlung von antimikrobiellen Resistenzen
• Nachteile:
  • Erfordert ein Bakterienisolat
  • In-vitro-Ergebnisse können geringgradig von In-vivo-Ergebnissen abweichen
  • Einige spezifische Antimikrobiotika werden möglicherweise nicht getestet oder erfordern separate Tests
  • Moderate Kosten

Immunhistochemie (IHC)

• Nachweis des bakteriellen Antigens
• Probenmaterial: Gewebe
• Vorteile:
  • Nachweis von Bakterien am Ort der Läsion (guter Beweis für Kausalität)
  • Nützlich bei chronischen Fällen oder wenn Tiere mit Antibiotika behandelt wurden und bakterielle Kultur schwierig ist
• Nachteile:
  • Das richtige Gewebe muss eingesendet werden
  • Erfordert eine größere Anzahl an Bakterien als PCR
  • Nur eine kleine Gewebeprobe wird bewertet

Polymerase-Kettenreaktion (PCR)

• Nachweis spezifischer bakterieller Nukleinsäuresequenzen (DNA)
• Probenmaterial: Gewebe, Vollblut, Serum, orale Flüssigkeiten, etc.
• Vorteile:
  • Sehr hohe Sensitivität (kann kleine Mengen Bakterien nachweisen)
  • Viele verschiedene Probenarten können verwendet werden
  • Moderate Kosten
• Nachteile:
  • Kann keine Unterscheidung zwischen lebenden Impfstoffbakterien und Feldinfektion treffen

Enzyme-linked Immunosorbent Assay (ELISA)

• Nachweis von Antikörpern
• Probenmaterial: Serum
• Vorteile:
  • Tiere können viele Monate positiv bleiben
  • Antikörperspiegel korrelieren bei vielen Tests gut mit Schutzfunktion
  • Kann in chronischen Fällen eingesetzt werden
• Nachteile:
  • Spezifische Antikörper und der Nachweiszeitpunkt können je nach kommerziellem Kit variieren
  • Viele gesunde Schweine können Träger sein und serologisch positiv reagieren
  • Kann nicht zwischen maternalen Antikörpern und Feldinfektionen unterscheiden
  • Kann nicht zwischen Impfstoff- und Feldinfektiontiter unterscheiden

Interpretation der Ergebnisse:

Makroskopie:

• Positiv: Hautläsionen können für eine mutmaßliche Diagnose genutzt werden
• Negativ: Chronische Fälle zeigen meist keine Hautläsionen

Bakterielle Kultur:

• Positiv: Bestätigt die Krankheit
• Negativ: Bedeutet negativ oder Anreicherung ist erforderlich, besonders bei chronischen Fällen oder wenn spät nach Infektion getestet wird

Antimikrobielle Empfindlichkeit:

• Empfindlich: ziemlich gute Möglichkeiten für antibiotische Behandlung, vorausgesetzt das Antibiotikum erreicht das Zielgewebe
• Resistent: Anderes Antimikrobiotikum wählen
• MIC: MICs werden gemacht um sicher zu stellen, dass das gewählte Antimikrobiotikum den gelisteten MIC-Wert im Zielorgan erreicht

IHC

• Positiv: Bakterien sind am Ort der Läsion vorhanden
• Negativ: Negativ oder Bakterien könnten übersehen worden sein, wenn Proben spät oder nach einer Antibiotikabehandlung entnommen wurden

PCR

• Positiv: Bakterien sind vorhanden/zirkulierend und bestätigen die Krankheit. Eine kürzliche Impfung mit Lebendimpfstoff kann zu positiven PCR-Ergebnissen führen
• Negativ: Negativ oder Bakterien könnten übersehen worden sein, wenn zu spät oder nach Antibiotikabehandlung getestet wurde

ELISA

• Positiv: Mütterliche Antikörper oder vergangene Exposition (meist >7–10 Tage nach Exposition) gegenüber Impf- oder Feldstammbakterien
• Negativ: Negativ oder Infektion ist zu früh; Antikörper sind normalerweise 2–4 Wochen nach Exposition nachweisbar

Szenarien

• Schweine mit Hautläsionen (meist >20 kg):
  • Makroskopische Läsionen wie Backsteinblattern dienen dazu eine vorläufige Diagnose zu stellen
  • Milz oder Leber von toten Schweinen entnehmen oder Blutprobe von lebenden Schweinen für bakterielle Kultur nehmen
  • Wenn die Schweine zuvor mit Antibiotika behandelt wurden, Kultur über selektive Anreicherung anfordern
• Chronische Arthritis (meist >20 kg):
  • Gelenkflüssigkeit der betroffenen Schweine entnehmen:
    • Einzel-PCRs durchführen
    • Kultur über selektive Anreicherung durchführen
  • Bei toten Schweinen zusätzlich Synovium und betroffenen Knorpel für Rotlauf-IHC entnehmen