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PRRS-Molekulardiagnostik: Wenn die Sequenzierung von nur 4 % nicht ausreicht

Genetische Mutationen und Evolutionen können in allen Genen des PRRS-Virus auftreten. Anders als bei ORF5, das nur etwa 4 % des PRRSV-Genoms ausmacht, kann mithilfe des Next-Generation-Sequencing (NGS) ein komplettes PRRSV-Genom für epidemiologische Untersuchungen gewonnen werden.

Das Virus des Porzinen Reproduktiven und Respiratorischen Syndroms (PRRSV) ist neben dem Virus der Afrikanischen Schweinepest einer der wirtschaftlich wichtigsten Krankheitserreger in der Schweineindustrie weltweit. Das jüngste Auftreten aggressiver PRRSV-Stämme wie des hochpathogenen PRRSV (HP-PRRSV) in Asien, der Rosalia-Variante in Europa und der L1C.5-Variante in Nordamerika hat die Diskussion über die Notwendigkeit einer weiteren Verbesserung der PRRSV-Diagnostik und -Kontrolle entfacht.

Der Nachweis von genetischem PRRSV-Material mittels RT-PCR ist weltweit üblich, um Populationen auf das Virus zu untersuchen.

Ein Schritt über den RNA-Nachweis hinaus ist die genetische Sequenzierung von PRRSV, die in der Regel mit der Sanger-Methode durchgeführt wird. Der weltweit am häufigsten verwendete Abschnitt des Virus für die PRRSV-Sequenzierung ist ORF5, obwohl einige Labors auch die Sequenzierung von ORF7 dokumentieren.

Da ORF5 etwa 4 % und ORF7 2,4 % des PRRSV-Genoms ausmachen, wird damit keine vollständige genetische Abdeckung des gesamten Genoms erreicht.

In den letzten Jahren ist das Interesse am Einsatz des Next-Generation-Sequencing (NGS) zur Gewinnung kompletter PRRSV-Genome für epidemiologische Untersuchungen von PRRSV in einem Bestand oder einem Betrieb gestiegen (s. Abb. 1).

Abbildung 1: Schematische Darstellung eines kompletten PRRSV-Genoms (GenBank U87392) und der Zielregionen für verschiedene Diagnosetests. In den USA zielen RT-PCR-Tests zum Nachweis von impfstoffähnlichen modifizierten Lebendviren (MLV) auf die nsp2-Region ab. Die CLAMP-Sequenzierung, die die Amplifikation von MLV-Impfviren während der Sanger-Sequenzierung blockiert, zielt auf das ORF5-Gen ab.

Abbildung 1: Schematische Darstellung eines kompletten PRRSV-Genoms (GenBank U87392) und der Zielregionen für verschiedene Diagnosetests. In den USA zielen RT-PCR-Tests zum Nachweis von impfstoffähnlichen modifizierten Lebendviren (MLV) auf die nsp2-Region ab. Die CLAMP-Sequenzierung, die die Amplifikation von MLV-Impfviren während der Sanger-Sequenzierung blockiert, zielt auf das ORF5-Gen ab.

Normalerweise kommt es bei PRRSV während des Replikationsprozesses zu genetischen Veränderungen und Mutationen, die möglicherweise zur Entstehung neuer Virusvarianten führen können. PRRSV ist mit einer Mutationsrate von etwa 0,5 bis 1 % pro Jahr eines der Viren mit der höchsten Mutationsrate. Diese ist ungleichmäßig über verschiedene Genomregionen, Virustypen und genetische Linien verteilt und führt zu einer ständigen genetischen Evolution. Genetische Mutationen und Evolutionen des Virus können insbesondere in allen Genen stattfinden. Bei der Sequenzierung nur eines Teils des Genoms, beispielsweise ORF5 oder ORF7, werden daher Veränderungen außerhalb der sequenzierten Region wahrscheinlich nicht erkannt (s. Abb. 1).

In diesem Szenario erweist sich das NGS als nützliches Instrument, da es die Möglichkeit bietet, ein komplettes PRRSV-Genom zu analysieren, um dies für epidemiologische Untersuchungen zu nutzen.

Wie können Tierärzte und Erzeuger die Vorteile des NGS nutzen?

Um den Nutzen des NGS zu maximieren, gibt es einige Punkte zu beachten:

  • Es ist wichtig, dass der Tierarzt und das Diagnoselabor frühzeitig einbezogen werden, um sich über die diagnostische Frage, die Erwartungen und das Testverfahren abzustimmen.
  • Gibt es eine vollständige Genomsequenz eines PRRSV-Referenzstammes aus dem Betrieb oder Produktionssystem zum Vergleich?
    • Wenn nicht, nutzen Sie das NGS bei Proben, die mittels RT-PCR positiv auf PRRSV getestet wurden und dabei niedrige Ct-Werte (idealerweise < 24) aufwiesen, um ein ganzes Genom als Referenzstamm für den Betrieb zu analysieren. Der Ct-Wert ist umgekehrt proportional zur Anzahl der in der Probe vorhandenen genetischen Kopien des Virus, d. h., je niedriger der Ct-Wert, desto höher ist die erwartete Viruslast und desto potenziell erfolgreicher das NGS.
    • Ein Referenzstamm ermöglicht den anschließenden Vergleich der später gewonnenen Genome, um die genetische Entwicklung von PRRSV innerhalb des Betriebs, der Partien und des Produktionssystems zu verstehen.
  • Was ist das Ziel von NGS?
    • Wenn das Ziel darin besteht, die Entwicklung des Virus auf Ebene des gesamten Genoms nachzuweisen, sollten Lungen- und Serumproben untersucht werden, da in diesen Proben mit größerer Wahrscheinlichkeit ein ganzes Genom gefunden werden kann.
    • Wenn das Ziel darin besteht, die virale Vielfalt in einem Betrieb oder Bestand zu verstehen, sollte man Populationsproben, z. B. von bei der Tierhaltung anfallenden Körperflüssigkeiten oder von oralen Flüssigkeiten, oder aber gepoolte Einzelproben wie z. B. gepoolte Serumproben verwenden. Bei diesen ist es wahrscheinlicher, dass mehrere Viren gefunden werden, wenn sie in der Probe vorhanden sind.
  • Mischinfektionen mit zwei oder mehr PRRS-Viren in einem Betrieb sind Realität (s. Abb. 2a). Wenn die beiden Viren sich sehr ähnlich sind, kann es sein, dass mit dem NGS kein vollständiges Genom gewonnen wird.
    • Wenn mehrere Viren in der Probe vorhanden sind, können mit dem NGS Genomfragmente, sogenannte „Contigs“, von verschiedenen Viren gewonnen werden. Diese können beim Vergleich mit einem Referenzstamm aus dem Betrieb dabei helfen, zu erkennen, ob mehrere Viren in der Probe vorhanden sind (s. Abb. 2b).
  • Stellen Sie schließlich sicher, dass Sie jemanden haben, der Sie bei der genetischen Analyse und den Vergleichen unterstützt und die Bearbeitungszeiten koordiniert, da NGS in der Regel ein langsamer Prozess ist, der mehr als eine Woche dauern kann.
Abbildung 2: A) Schematische Darstellung eines Vergleichs zweier kompletter PRRSV-Genomsequenzen, die aus einer gepoolten 15:1-Serumprobe mit einem Ct-Wert von 18,4 gewonnen wurden. Ein Virus wurde als Referenz festgelegt (blaue Farbe). Der Grad der Nukleotid&auml;hnlichkeit zwischen den Viren wird durch Zahlen in den roten Feldern dargestellt. B) Schematische Darstellung eines Vergleichs von zwei PRRSV-Genomsequenzen, die aus einer 5:1-gepoolten Serumprobe mit einem Ct-Wert von 19,5 gewonnen wurden. Ein Virus wurde als Referenzstamm festgelegt (blaue Farbe). Der Grad der Nukleotid&auml;hnlichkeit zwischen den Genomfragmenten, die aus dem zweiten Virus gewonnen wurden, ist farblich gekennzeichnet und auch durch Zahlen in den roten Feldern dargestellt. Die Gene des PRRSV-Genoms sind im oberen Teil der beiden Grafiken A und B dargestellt. Die einzelnen ORFs, die in einer Sequenz des kompletten PRRSV-Genoms vorhanden sind, werden ebenfalls im oberen Teil der Grafiken A und B dargestellt.

Abbildung 2: A) Schematische Darstellung eines Vergleichs zweier kompletter PRRSV-Genomsequenzen, die aus einer gepoolten 15:1-Serumprobe mit einem Ct-Wert von 18,4 gewonnen wurden. Ein Virus wurde als Referenz festgelegt (blaue Farbe). Der Grad der Nukleotidähnlichkeit zwischen den Viren wird durch Zahlen in den roten Feldern dargestellt. B) Schematische Darstellung eines Vergleichs von zwei PRRSV-Genomsequenzen, die aus einer 5:1-gepoolten Serumprobe mit einem Ct-Wert von 19,5 gewonnen wurden. Ein Virus wurde als Referenzstamm festgelegt (blaue Farbe). Der Grad der Nukleotidähnlichkeit zwischen den Genomfragmenten, die aus dem zweiten Virus gewonnen wurden, ist farblich gekennzeichnet und auch durch Zahlen in den roten Feldern dargestellt. Die Gene des PRRSV-Genoms sind im oberen Teil der beiden Grafiken A und B dargestellt. Die einzelnen ORFs, die in einer Sequenz des kompletten PRRSV-Genoms vorhanden sind, werden ebenfalls im oberen Teil der Grafiken A und B dargestellt.

Welche Art von epidemiologischen Informationen können wir vom NGS erhalten?

Die vom NGS erzeugten Ergebnisse können dabei helfen, folgende Fragen zu beantworten:

  1. Hat sich ein Virus durch zufällige Nukleotidsubstitutionen an denselben genomischen Positionen entwickelt? Wie stark hat sich das Virus zwischen zwei Zeitpunkten verändert und in welcher ORF-Region oder welchen ORF-Regionen sind diese Veränderungen aufgetreten?
  2. Hat sich das Virus durch Insertionen oder Deletionen in seinem Genom weiterentwickelt?
  3. Wurde ein neues, nicht verwandtes Virus in den Betrieb, den Bestand oder die Partien eingeschleppt?
  4. Hat ein neues Virus – was zwar weniger wahrscheinlich, aber dennoch möglich ist – Veränderungen in den Genomregionen erworben, auf die die RT-PCR oder die Sanger-Sequenzierung abzielt, sodass die Assays das Virus nicht nachweisen können?
  5. Hat das Virus eine Rekombination erfahren, d. h. hat es einige genomische Regionen von zwei oder mehr Elternviren übernommen?

Rekombination ist ein natürlicher Prozess der PRRSV-Evolution und tritt auf, wenn sich zwei PRRS-Viren in derselben Zelle replizieren und daraus ein drittes Virus entsteht. Die Rekombination wird in dem am 14. Juli 2025 auf www.3tres3.com/de veröffentlichten Artikel „Die Auswirkungen des Problems der PRRSV-Rekombinationen“ beschrieben.

#(enfermedades_consulta_guia)

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